1. 把要做的切片先分好，做幾個抗體可分幾盒，不正常組織與正常組織要分開。其余做預實驗用。

2. 選擇實驗要做的抗體時，要結(jié)合他們的正常組織和癌組織的分別表達率。

3. 試劑盒的選擇可結(jié)合生物素強弱的情況。如：肝組織生物素含量高，S-P試劑盒生物素含量也高，故不能配合使用。

4. 每次開始做時，都必須先清點實驗的必需品是否齊全。想好可能發(fā)生的意外，并先想好補救措施。當抗體不夠用的情況下，原先買的抗體*不要用完，留做可能需要的驗證試驗。新的抗體要盡量同公司，同批號。

5. 烤片單一或綜合程度要適情況而定，可中途拿出甩一甩，盡可能先放在烤箱里烤3小時以上。切勿把片烤得太久了。程度剛好，脫蠟效果才會好。注意做好不同條件的切片標記。注意溫度穩(wěn)定，再烤片。

6. 二甲苯脫蠟。溫度過低時，可先把二甲苯整罐放進烤箱加熱，或者可把片放在二甲苯里一起加熱脫蠟，這樣效果會更好；若溫度適宜，那還是在室溫下脫蠟，要不可能會適得其反。時間也是適情況而定。

7. 高壓修復時，要注意稀釋比例，修復液的種類  EDTA不可以重新進行利用，可能發(fā)生交叉作用，PH值等。高壓鍋內(nèi)壓力未降至正常時不可打開，壓力正常后可多放會兒，能更好的利用余壓，把握程度。若是多次修復，每次都需先把鍋內(nèi)熱水倒掉，換冷水，保證條件的可重復性。

8. 抗體反復凍融可使效價降低?？贵w要防止污染。不可用塑料保存，塑料可吸附抗體。抗體稀釋：應遵循“現(xiàn)用現(xiàn)配”的原則，對于PBS 其他稀釋液，注意PH值，PBS為偏中堿性 稀釋的抗體*要當天使用。稀釋比例恰好為佳，注意前帶和后帶效應。

9. 吹干封片時不能有泡泡。若是沒封好，可進行二甲苯、酒精脫樹膠，吹干再次封片，但鏡下效果會明顯變差。因而，若沒必要，*不要再次脫膠。DAB顯色需用中性樹膠封片，AEC 易溶于有機溶劑 需用水性膠封片。

10. 剛封完的載玻片會移動，故切片還沒干時，盡量不要碰到蓋玻片，可避免樹膠溢出，片的整體效果不好。